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생물학 선택 과목은 무엇을 선택해야 합니까?
시험점 1, 효소의 응용: 효모는 세탁 등에 응용한다. 고체상 효소의 제조 및 응용

첫째, 효소는 세탁 등에 응용한다

1. 효소 세제는 효소제가 함유된 세제를 가리킨다. 현재 일반적으로 사용되는 효소 제제에는 프로테아제, 리파아제, 아밀라아제, 섬유소 효소의 네 가지가 있다. 그중 알칼리성 단백질 효소와 알칼리성 지방효소가 가장 널리 사용되고 효과가 가장 두드러진다. 알칼리성 단백질 효소는 혈분, 우유 얼룩 등에 함유된 대분자 단백질을 해독할 수 있다. 용해성 아미노산이나 작은 텅스텐으로 변하면 얼룩이 옷에서 떨어질 수 있다. 지방효소, 디아스타제, 섬유소 효소는 각각 거대 분자 지방, 전분, 섬유소를 소분자 물질로 가수 분해하여 세제를 더 강한 오염 제거 능력을 갖게 한다.

효소 제제의 특징: 내산 알칼리, 내표면활성제, 내고온성, 특수 화학물질로 효소층을 감싸 세제의 다른 성분과 격리시킨다.

효소 활성에 영향을 미치는 요인은 온도, pH 및 계면 활성제입니다. 효소는 세제에 직접 첨가할 수 없다. 세제에 들어 있는 표면 활성 물질이 효소의 활성을 떨어뜨릴 수 있기 때문이다. 유전공학에 의해 생성 된 효소는 세제의 다른 성분에서 분리 되는 특별 한 수용 성 물질로 포장 된다.

3. 효소 세제를 첨가하면 환경오염을 줄일 수 있다. 효소 세제를 첨가하면 표면활성제와 삼폴리인산나트륨의 양을 줄이고 세제를 저인 무인 방향으로 발전시킬 수 있기 때문이다. (일반 세제의 화학성분으로는 표면활성제, 연수기, 알칼리제, 표백분 등이 있습니다. 일부 세제에는 증백제, 향료, 색소, 충전제도 함유되어 있다. ) 을 참조하십시오

일반 세제에 효소 세제를 넣다

동점표면활성제는 거품을 일으키고, 기름분자를 분산시키고, 연수기는 더러움을 분산시킬 수 있다.

다른 효소는 큰 분자를 작은 분자로 분해할 수 있고, 작은 분자는 물에 잘 용해되어 섬유와 분리된다.

4. 세탁 효과는 세탁 후 더러움의 잔여상태를 비교해서 판단할 수 있습니다. 예를 들면 사라지고, 색이 옅어지고, 면적이 작아지는 등.

둘째, 고체상 효소의 제조와 응용

1. 고정화효소는 일정 공간 범위 내에서 촉매 작용을 하여 연속적으로 재사용할 수 있는 효소를 말한다.

원리: 효소를 물 불용성 운반체에 고정시켜 효소가 쉽게 반응하고 재활용이 쉬워 재사용할 수 있게 한다.

2. 고정화 효소 기술을 이용하여 효소를 입자형 운반체에 고정시킨 다음, 이 효소 알갱이를 반응 기둥에 넣고, 기둥 밑에 구멍이 많은 체판을 설치한다. 효소 입자는 체판의 작은 구멍을 통과할 수 없지만 반응액은 자유롭게 드나들 수 있다. 생산 과정에서 포도당 용액은 반응 기둥의 윗부분에서 주입되어 포도당 용액이 반응 기둥을 통과해 고정화된 포도당 이질효소와 접촉하여 과당으로 전환되어 반응 기둥의 아래쪽에서 흘러나오게 한다. 반응 기둥은 반년 연속 사용할 수 있어 생산 비용을 크게 절감하고 과당의 생산량과 품질을 높였다.

3. 고정화 효소와 고정화 세포는 물리적 또는 화학적 방법을 통해 효소나 세포를 일정한 공간에 고정시키는 기술로, 임베딩 방법, 화학 결합법, 물리적 흡착법을 포함한다. 일반적으로 효소는 화학적 결합과 물리적 흡착을 통해 고정화하는 데 더 적합하며, 세포는 대부분 매립법을 사용하여 고정화한다. 이것은 세포가 크고 효소 분자가 작기 때문입니다. 큰 효소는 흡착되거나 결합하기 어렵고, 작은 효소는 임베디드 재료에서 쉽게 누출된다.

4. 임베딩 방법 고정화 세포, 미생물 세포를 수 불용성 운반체에 내장한다. 일반적으로 사용되는 전달체 소재로는 젤라틴, 진지당, 해조산나트륨, 아세테이트섬유소, 폴리아크릴이 있습니다.

고정화 세포는 고정화 효소를 바탕으로 개발되었으며, 그 장점은 (1) 효소의 분리 절차를 생략하고 보조 인자 재생이 필요하지 않은 다효소계라는 점이다. (2) 세포는 빠르게 성장하고, 수가 많고, 반응이 빠르다. (3) 연속 발효를 통해 비용을 절약 할 수 있습니다. 또한 증류를 하기 전에 세포를 분리할 필요가 없고, 배양할 때 발효액을 배출하여 산물 억제와 소비를 없앨 수 있다. (4) 세포 내 효소의 원래 상태를 유지하여 효소의 안정성, 특히 오염 요인에 대한 저항성을 증가시킨다.

단점: (1) 세균의 무결성을 유지하고 세균자가 용해를 방지해야 합니다. 그렇지 않으면 제품의 순도에 영향을 줄 수 있습니다. (2) 세포 내 프로테아제 분해에 필요한 효소를 방지하고 세포 내 다른 효소의 활성화로 인한 부산물을 억제해야 한다. (3) 세포막과 세포벽은 기질의 침투와 확산을 방해한다.

유형 이점 부족

효소의 직접적인 사용은 효율이 높고, 에너지 소비량이 낮고, 오염이 적다. 환경 조건에 매우 민감하여 불활 해지기 쉽다. 용액 속의 효소는 회수하기 어렵고, 재사용할 수 없고, 생산비용을 증가시킨다. 반응 후 제품에 효소가 섞여 제품 품질에 영향을 줄 수 있다.

고정화 효소는 반응물과 접촉할 수 있고 산물과 분리될 수 있으며, 운반체에 고정되어 있는 효소는 재사용할 수 있다. 효소는 하나의 화학 반응만 촉매할 수 있지만, 생산 관행에서 많은 산물은 일련의 효소 촉진 반응을 통해 형성된다.

고정화 세포는 비용이 낮고 조작하기 쉽다. 고정화 효소나 세포가 반응물에 접근하기 쉽지 않아 반응 효과가 떨어질 수 있다.

신청: 1. 한 실험팀 학생은 고정화 효모 세포를 준비하여 포도당 용액 발효 실험에 사용하고, 실험 재료와 기구가 완비되어 있다. 임베딩 방법으로 고정화 (1) 효모 세포.

(2) 이 실험팀 학생들이 고정화 효모 세포를 준비하는 과정의 절차를 보완해 주세요.

① 염화칼슘 용액을 준비할 때 증류수를 사용한다. (2) 알긴산 나트륨은 저으면서 작은 불로 간헐적으로 가열해야 한다. ③ 효모 세포를 첨가하기 전에 해조산나트륨 용액은 실온까지 냉각해야 한다. ④ 주사기 속 해조산나트륨과 효모 세포의 혼합물을 염화칼슘 용액에 떨어뜨려 젤주를 형성한다.

(3) 실험팀은 그림과 같이 장치를 이용해 포도당을 발효시킨다.

① 본 실험에 사용된 고정화 효모 세포를 재사용하기 위해서는 무균 상태에서 실험을 해야 한다.

2 반응액을 넣은 후 피스톤 1 및 피스톤 2 를 닫는 작업입니다.

③ 장치의 긴 카테터는 어떤 역할을합니까? 반응 탑의 압력을 줄이기 위해 이산화탄소를 방출한다. 공기가 반응탑에 들어가는 것을 방지하다.

(4) 실험 과정에서 관찰될 수 있는 현상: 거품이 생겨 알코올 냄새가 난다.

실험 과정에서 장치 내에서 발생할 수 있는 반응식은 (유산소 호흡과 무산소 호흡은 알코올과 이산화탄소를 생성한다)

적용: 2. 맥아는 알긴산 나트륨과 맥주 효모로 만든 젤 구슬에 스며들 수 있으며, 맥주 효모는 자신의 세포에 있는 일련의 효소를 이용하여 발효당을 에탄올로 바꿀 수 있다. 다음은 고정화 효모 세포가 맥주를 생산하는 실험 과정이다.

단계 1: 효모 세포의 활성화. 50mL 비이커에 1g 건효모를 넣고 10ml 증류수를 넣고 섞어서 65438±0h 를 고정시킵니다.

2 단계: 농도가 0.05 무어/리터인 염화칼슘 (CaCl2) 용액을 준비합니다 .....

세 번째 단계: 알긴산 나트륨 용액의 제조. 0.7g 해조산나트륨을 50m l 비이커에 넣고 l0mL 증류수를 넣고 술잔등에 비이커를 올려 작은 불이나 간헐적으로 가열한다고 합니다.

4 단계: 활성화된 효모 세포를 상온으로 냉각된 해조산나트륨 용액에 넣고 충분히 섞어서 주사기로 옮긴다.

다섯 번째 단계: 고정 효모 세포. 주사기의 용액을 천천히 배합한 염화칼슘 (CaCl2) 용액에 균일하게 떨어뜨려 젤구슬을 형성하고, 젤구슬을 CaCl2 용액에 30 분 동안 담갔다.

6 단계: 증류수로 고정화 효모 세포 (젤주) 를 2 ~ 3 회 세척한다.

7 단계: 적당량의 젤구슬을 500mL 송곳병에 넣고 300mL 멸균 밀즙, 밀봉, 25 C 발효를 넣는다.

위의 절차를 자세히 읽고 다음 질문에 답하십시오.

(1) 6 단계 증류수로 2 ~ 3 회 헹구는 목적은 불순물 (염화칼슘) 과 잡균을 씻어서 오염을 막기 위한 것이다.

(2) 발효산물의 알코올은 중크롬산 칼륨으로 검사할 수 있지만 산성 조건에서는 회록색으로 변한다.

(3) 겔 비드의 품질을 테스트하는 방법? 첫 번째 방법은 핀셋으로 젤구슬을 집어 실험대 위에 놓고 손으로 짜는 것이다. 젤구슬이 쉽게 깨지지 않고 액체가 흘러나오지 않으면 젤구슬이 성공적으로 만들어졌다는 뜻입니다. 두 번째 방법은 실험대에서 젤 구슬을 두드리는 것이다. 젤구슬이 쉽게 튕기면 준비한 젤구슬이 성공적이라는 것을 알 수 있다. ) 을 참조하십시오

시험점 2, 생명기술의 식품 가공에 적용: 발효식품 가공의 기본 방법

1. 발효: 넓은 의미에서 미생물의 배양을 통해 각종 대사산물을 대량 생산하는 과정이다. 호기성 발효 (예: 아세트산 발효, 글루타메이트 발효) 와 혐기성 발효 (예: 알코올 발효) 를 포함한다. 좁은 의미: 미생물의 혐기성 호흡 (알코올 발효, 젖산 발효 등) 을 가리킨다. 그래서: 발효 ≠ 혐기성 호흡.

용도: 양조, 찐빵 만들기, 빵 만들기, 양조, 약용 효모 정제 생산, 비타민 생산, 항생제 생산 등.

둘째, 과주 생산 원리: 균종: 효모, 단세포 진핵생물, 이양 겸성 습산소, 적절한 조건 하에서 싹이 나고 번식하는 1, 효모 겸성 습산소 생활 방식: 유산소 호흡, 유산소 조건 하에서 대량 번식 (무성출아 번식). 알코올은 혐기성 조건 하에서 발효된다. 번식을위한 최적 온도: 20℃; 알코올 발효의 최적 온도는 65438 08 ~ 25 C 입니다.

효모는 20 C 안팎의 혐기성 및 산성 발효액에서 알코올 발효를 번식하고 할 수 있다 (일반적으로18 ~ 25 C, 20 C 가 가장 적합하다). 다른 대부분의 미생물들은 이 환경에 적응할 수 없기 때문에 억제된다. 2. 온도가 발효에 미치는 영향: 효모는 일정한 온도에서만 생존할 수 있다. 온도가10 C 이하일 때 효모의 발육이 느리다. 온도가 높아지면서 번식 속도가 빨라지고, 20 C 가 최적의 번식온도로 효모가 번식하는 속도가 빠르고 활력이 강하다. 온도가 35 C 를 넘으면 효모의 성장이 억제되어 번식 속도가 급속히 떨어진다. 40 ℃에서 효모는 싹이 나지 않고 죽기 시작했다. 알코올 농도가 높은 발효액을 얻고 실제 손실을 줄이려면 발효온도를 조절해야 한다.

3. 발효액 오염을 방지하는 조치: 착즙기는 깨끗이 씻어서 말려야 하고 발효병은 70% 알코올로 소독하고 포도즙을 가득 채운 후 밀봉해야 한다.

4. 포도주가 붉은색을 띠는 이유: 발효 과정에서 알코올 도수가 높아지면서 붉은 포도 껍질의 색소도 발효액에 들어가 포도주를 붉은색으로 만든다.

셋째, 과일식초를 만드는 원리: 균종: 초산균, 원핵 생물, 이양호기성 유형, 이원분열 번식 1, 술을 식초로 바꾸는 원리: 산소와 당원이 충분할 때 초산균은 포도즙의 당분을 초산으로 분해한다. 당원이 없을 때 초산균은 에탄올을 아세트알데히드로 바꾸고, 아세트알데히드는 초산으로 변한다. C2H5OH+O2 → CH3COOH+H2O (발효 조건: 온도가 적당하고 시기적절한 통풍이 가능하며 당원 공급을 제어함) 2. 발효 조건을 조절하는 역할: ① 초산균은 산소 함량에 특히 민감하여 심층 발효 과정에서 짧은 시간 동안 산소를 중단해도 초산균이 사망한다. ② 아세트산 박테리아의 최적 성장 온도는 30 ~ 35 ℃이다. 발효 온도를 조절하면 발효 시간을 단축하고 잡균 오염의 기회를 줄일 수 있다. 3. 식초균원: 현지 식초 공장이나 균종 보존센터에서 균종을 구입할 수 있습니다. 식초균도 식초에서 분리할 수 있다. 과주 식초의 생산공예: 포도 → 청소 → 즙 짜기 → 알코올 발효 → 과주 (→ 아세트산 발효 → 과초). 넷째, 썩은 우유를 만드는 원리: 균종: 모곰팡이, 진핵생물, 이양호기성, 포자 번식.

1, 다양한 미생물들이 두부 발효에 참여하고 있습니다. 예를 들면 곰팡이, 효모, 곰팡이, 곰팡이 등이 있습니다. 그중에서 곰팡이가 주요 작용을 한다. 곰팡이는 일종의 사상 진균이다. 곰팡이 등 미생물이 생산하는 프로테아제는 두부 속의 단백질을 작은 펩타이드와 아미노산으로 분해할 수 있다. 리파아제는 지방을 글리세롤과 지방산으로 가수 분해 할 수 있습니다. 2. 두부를 만드는 실험과정: 모균이 두부에 자라게 하는 과정 → 소금 절임 → 할로겐 국물 병 → 봉인 절임 (1). 곰팡이의 성장: 두부를 찜통에 평평하게 놓고 찜통 안의 온도를15 ~18 C 로 조절하고 일정한 온도를 유지한다. 약 48 시간 후, 곰팡이가 자라기 시작했고, 3 일 후 균사가 왕성하게 자랐고, 5 일 후 순두부의 표면은 균사로 가득 찼다. 두부 덩어리에서 자란 곰팡이는 공기 중의 곰팡이 포자에서 유래한 것으로, 현대 유유 생산은 엄격한 무균 조건 하에서 우수한 곰팡이종을 두부에 직접 접종하면 다른 균종의 오염을 방지하고 제품의 품질을 보장할 수 있다. (2) 절임: 곰팡이가 낀 두부를 병안에 레이어링하고, 동시에 레이어별로 소금을 넣는다. 층수가 증가함에 따라 소금의 양이 증가하고 병 입구 표면 근처의 소금이 더 두껍습니다. 절인 시간은 8 일 정도입니다. 소금을 넣으면 두부의 수분을 석출해 두부를 단단하게 만들 수 있으며, 후기 제작 과정에서 너무 일찍 바삭하게 썩지 않는다. 동시에 소금은 미생물의 성장을 억제하여 두부의 변질을 막을 수 있다. (3) 할로겐 수프의 준비: 할로겐 수프는 썩은 우유의 색깔, 향, 맛과 직결된다. 통조림 수프는 술과 각종 향신료로 만든 것이다. 간수탕에서 술의 함량은 일반적으로 12% 정도이다. 술을 첨가하면 미생물의 성장을 억제하여 유유가 독특한 맛을 낼 수 있다. 향신료는 썩은 우유의 맛을 조절할 수 있고 방부 살균작용도 있다. 3. 실험 중의 주의사항 (1) 은 재료 사용량을 조절한다: ① 소금으로 절일 때 소금의 양을 조절한다. 소금의 농도가 너무 낮아 미생물의 성장을 억제할 수 없어 두부의 부패가 변질될 수 있다. 소금 농도가 너무 높으면 썩은 우유의 식감에 영향을 줄 수 있다. ② 염수탕 중 술의 함량은 65438 0.2% 정도로 조절해야 한다. 알코올 함량이 높을수록 단백질 효소에 대한 억제 작용이 커질수록 썩은 우유의 성숙 시간이 길어진다. 알코올 함량이 너무 낮으면 미생물 성장을 억제하고, 프로테아제 활성성이 높고, 단백질 가수 분해를 가속화하고, 잡균이 번식하고, 두부는 썩기 쉽다. ③ 사용된 두부의 수분 함량은 약 70% 로, 수분 함량이 너무 높아서 성형하기 어렵다.

(2) 잡균오염을 방지한다. ① 썩은 우유를 담그는 유리병은 깨끗이 씻은 후 끓는 물로 소독해야 한다. (2) 병을 담을 때, 조작은 빠르고 조심해야 한다. 두부는 가지런하게 차려놓고 간수가 좋은 국물을 넣은 후 테이프로 병 입구를 막아야 한다. 병을 봉인할 때는 알코올 램프의 화염을 통해 병이 오염되는 것을 방지하는 것이 가장 좋다. ③ 병 입구에 가까울수록 잡균오염 가능성이 높다. 따라서 소금의 양은 두부 층의 수가 증가함에 따라 증가하고 병 표면 근처의 소금은 두껍게 깔아야 한다.

시험점 3. 생명공학은 다른 방면에서 응용한다: 단백질의 추출과 분리.

첫째, 단백질 추출 및 분리의 기본 원리와 방법.

1, 실험원리: 단백질의 이화 성질: 모양, 크기, 전하 성질과 수량, 용해성, 흡착성, 친화력 등. 이것으로부터 각종 단백질을 추출하고 분리한다. 2. 젤층 분석 (분배층 분석): (1) 원리: 분자량이 큰 분자는 다공성 젤 입자의 틈새를 통해 거리가 짧고 유속이 빠르다. 분자량이 작은 분자는 다공성 젤 알갱이를 통해 거리가 길고 흐름이 느리다. (2) 젤 재료: 다공성과 다당화합물 (예: 글루칸과 진지당). (3) 분리 과정: 혼합물 상기둥 → 용출 → 고분자 급류 소분자 느린 흐름 → 고분자 수집 → 소분자 수집 (용출: 스펙트럼 기둥 상단에서 완충액을 연속적으로 주입하여 단백질 분자의 차류를 촉진한다. (4) 기능: 단백질 분리, 생물학적 고분자 분자량 측정, 단백질 탈염 등. 완충용액: (1) 원리: 약산과 해당 강산염 (예: H2CO3-NaHCO3, HC-NAC, NaH2PO4/Na2HPO4 등) 으로 구성됩니다. ). 산과 소금의 양을 조절하여 다른 pH 값의 완충용액을 만들 수 있다. (2) 작용: 외부 산알칼리의 용액 pH 값에 대한 간섭을 막아 pH 값을 안정적으로 유지한다. 4. 겔 전기 영동법: (1) 원리: 단백질에 따라 전기 특성, 전력, 모양, 크기가 다르고 전기장에서 작용력의 크기, 방향, 저항이 다르기 때문에 전기장에서 단백질의 움직임과 속도가 다르다. (2) 분리 방법: 아가로 오스 겔 전기 영동, 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 등. (3) 분리 과정: 특정 pH 값에서 단백질기단은 양전하나 음전하를 띠고 있다. 음전하를 띤 SDS 를 더 추가하면 단백질 -SDS 복합물이 형성되어 단백질 이동률이 분자 크기에만 좌우된다.

둘째, 단백질 추출 및 분리 실험 단계:

1, 샘플 처리 ① 적혈구 세탁: 적혈구를 씻는 목적은 불순물을 제거하는 것이다. 채집된 혈액 샘플은 제때에 짧은 저속 원심분리기를 한 다음 고무빨대로 상층 투명황색 혈장을 빨아들이고, 하층 진홍색 적혈구를 비이커에 붓고 생리염수를 5 배 더 넣고 천천히 저속원심을 저속히 섞고, 상청액에 노랑이 없어 적혈구를 나타낼 때까지 세 번 반복해서 세탁해야 한다. ② 헤모글로빈의 방출: 증류수와 톨루엔의 작용으로 적혈구가 파열되어 헤모글로빈이 방출된다. (참고: 증류수를 첨가한 후 적혈구의 부피는 원혈과 같아야 한다. 톨루엔을 첨가하는 목적은 세포막을 용해시켜 헤모글로빈의 방출과 분리에 유리하다. ) 2. 굵게 분리 ① 헤모글로빈 용액 분리: 잘 섞은 혼합용액을 원심시킨 후 시험관 속 용액을 4 층으로 나눕니다. 1 층은 무색투명한 톨루엔층이고, 2 층은 얇은 흰색 고체이며, 지용성 물질의 퇴적층이고, 3 층은 붉은색 투명액체이며, 헤모글로빈의 수용액이고, 4 층은 다른 불순물의 어두운 붉은색 침전이다. 여과지로 시험관의 액체를 여과하고 용해성 침전층을 제거한 다음 분액 깔때기에 일정 기간 동안 가만히 두어 아래층의 붉은색 투명한 액체를 분리한다. ② 투석: 1mL 헤모글로빈 용액을 투석백에 넣고 투석봉투를 300mL 물질이 함유된 20MMMOL/L 인산염 완충액, 투석 12h 에 넣는다. 투석은 샘플에서 분자량이 작은 불순물을 제거하거나 샘플의 완충액 대신 사용할 수 있다. 정화: 4. 순도 확인: SDS 폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동

셋. 주의 사항 1. 전기 수영 기술: 전기 수영 기술은 분리될 샘플에서 다양한 분자의 전기 성질과 전기장 작용 하에서 분자 자체의 크기와 모양의 차이를 이용하여 전기 분자가 서로 다른 이동 속도를 갖도록 하여 샘플을 분리, 감정 또는 순수화하는 목적을 달성한다. 2. 적혈구 세탁: 층화가 눈에 띄지 않으면 세탁 횟수가 적어서 혈장 단백질을 제거할 수 없는 원인이다. 또 원심속도가 너무 빨라서 시간이 너무 길면 백혈구와 림프세포가 함께 침전되어 순수한 적혈구를 얻지 못하고 후속 헤모글로빈의 추출 순도에 영향을 미친다. 3. 젤이 성공적으로 채워졌는지 확인하는 방법: 젤은 반투명 매체이기 때문에 옆에 젤기둥에 수직인 형광등을 넣어 젤이 골고루 채워졌는지 확인할 수 있습니다. 또한 고분자 유색 물질을 첨가하여 색대의 움직임을 관찰할 수 있다. 리본이 균일하고 좁고 평평하면 젤 스펙트럼 기둥의 성능이 좋다. 색상 스펙트럼에 선이나 거품이 있는 경우 색상 스펙트럼을 가볍게 두드려 거품을 제거하고 제거할 수 없는 경우 색상 스펙트럼을 다시 설치하십시오. 젤은 왜 촘촘하게 채워야 합니까? 젤이 촘촘하지 않고 균일하지 않으면 색상 스펙트럼에 유효하지 않은 간격이 형성되어 젤에 들어가야 하는 샘플 분자가 이러한 간격을 통과하여 세제액의 흐름 순서를 흐트러뜨리고 분리 효과에 영향을 줍니다. 5. 용리액으로 끓는 물에 젖은 젤을 처리하는 목적은 시간을 절약하기 위해서일 뿐만 아니라 젤에 휴대할 수 있는 미생물과 젤의 공기를 제거하기 위한 것이다. 6.G-75: "G" 는 젤의 가교, 팽창 및 분리 범위를 나타내고, 75 는 젤의 물 값, 즉 젤이 녹을 때마다 7.5g 의 물을 흡수하는 것을 나타냅니다. 7. 충전한 후 바로 용리액으로 세탁합니다. 목적: 젤을 단단히 충전합니다. 8. 구연산 나트륨을 첨가하는 목적은 무엇입니까? 왜 저속으로 단시간 원심분리기를 해야 합니까? 너는 왜 아주 느리게 저었니? 혈액 응고를 방지하다. 백혈구 침전을 방지하다. 적혈구가 파열되어 헤모글로빈을 방출하는 것을 방지하다. 9. 다른 진핵세포에 비해 적혈구의 특징과 이 특징이 단백질 분리에 미치는 의미: 포유동물과 인간의 성숙한 적혈구는 양면오목판이며 핵과 세포기가 없다. 그 안에 들어 있는 헤모글로빈은 유색 단백질로, 젤 스펙트럼이 분리될 때 색상을 관찰하여 언제 액체를 수집해야 하는지를 판단할 수 있다. 이로 인해 헤모글로빈의 분리 과정이 매우 직관적으로 진행되어 실험 조작이 크게 간소화되었다. 10. 헤모글로빈의 분리가 성공했는지 여부를 감지하는 방법 붉은 띠가 왜곡되고 분산되고 넓어지면 분리 효과가 좋지 않아 젤 스펙트럼 기둥의 충전재와 관련이 있다.