현장 실험 장소는 산시 () 성 옌안시 안세현 건화사 () 향 맹신장 () 이 채유회사 흥 2 유전을 연장하는 곳이다. 우물장 수력이 원활하고, 유휴공장이 있으며, 연장석유회사 살구자천 채유구에 속하며, 안세현성에서 30km 떨어져 있다 (그림 6-9).

그림 6-9 안세살구천 살구 2 유전 위치도 ☆ 살구 2 정 위치입니다.

테스트 과정에서 수원은 필수적이다. 한편으로는 실험에 필요한 최소 수분 함량을 달성하기 위해 시험토층에 물을 계속 넣어야 한다. 한편, 샘플을 검사할 때는 물로 샘플을 희석하고 그릇을 닦는 등이 필요하다. 동시에, 실험에서 테스트해야 할 토양 샘플의 수가 엄청나다. 실내 테스트로 돌아가면 시간이 많이 걸리고 힘들고 운송도 필요하므로 테스트 오류 확률이 높아진다. 이번 테스트는 52 일 동안 진행되어 테스트 현장은 장기적이고 엄격한 관리가 필요하다.

싱 2 우물은 위의 조건을 충족시킬 수 있으며, 테스트 프로세스는 관리가 쉽고 시간과 노력을 절약할 수 있습니다. 게다가, 이 우물장의 채유정은 원유의 채집을 테스트하기 쉽도록 채굴되고 있다.

둘째, 실험 설계

1. 식물 제제의 준비 최적화

먼저 실내에서 배양된 균군을 단계적으로 키우고 접종량은 10% 로 석유세균 농축 배양기를 분해한다.

K2HPO4( 1.0g), KH2PO4( 1.0g), mgso 4·7H2O(0.5g), nh4no3 ( 121℃멸균 30 분.

비례에 따라 충분한 양의 증강균액제를 배양하는데, 매번 증강배양할 때마다 5-8 일이 걸린다. 마지막으로, 밭에 나가기 전에 배양한 균액제제를 25L 의 큰 플라스틱 통에 보관하여 필요와 가능한 양에 따라 3 통을 준비하여 75L 을 차지한다. 밭에 나가기 전에 현미경으로 큰 통의 균액을 검사하여 균군의 성장과 수량이 풍부한지 확인하다.

2. 실험 장비

화학 시약: MgSO4 7H2O, NH4NO3, CaCl2, FeCl3, KH2PO4, K2HPO4, KCl, 염산, 주석산 칼륨 나트륨, 석유에테르, 염소 모조는 모두 분석순입니다.

실험유는 실험장 아래 2400 미터에서 생산된 원유이다.

실험용 유리그릇 등. : 150mL, 250mL 플러그 삼각형 병, 125mL, 1000mL 미세 입 시약병, 50mL, 25mL 비색관, 각각

주요 기기: QZD- 1 전자기 발열기, 752N 18 초음파 세척기, 바이오온도 조절기, 고속 원심분리기, 고압 증기 멸균기, 무균실험실, 생화학 배양기, 흔들기 배양기

3. 검출 방법

석유탄화수소와 NO-3 함량은 독일에서 제공하는 초음파-자외선 분광 광도법, NH+4 함량은 나씨 시약 비색법 측정, pH 값은 pHB-3 pH 계 직접 측정, TDS 는 DDB-303A 전도율계로 측정한 전도율 계산을 사용합니다.

실험 현장 배치 및 기본 물리적 매개 변수 테스트.

실험을 하기 전에 실험 영역을 평평하게 하고 표면 부식층을 제거한 다음 8 개의 실험 영역 (실험 영역 1, 실험 영역 2, 실험 영역 3, 실험 영역 4, 실험 영역 5, 실험 영역 6, 비교 영역 및 빈 영역) 으로 나눕니다. 각 구획의 크기는 120cm× 120cm 이고 각 구획은 20cm 떨어져 있습니다. 실험 설계 깊이는 0 ~ 15cm 로 결국 50cm 에 이른다. 구획은 실험 구역 분포도 6- 10 에 표시된 대로 서쪽에서 동쪽으로 배열됩니다.

각 실험 구역의 기본 데이터를 취하다. 먼저 실험 구역 표면의 인공충토를 제거하여 제자리의 토양을 노출한다. 원토암석학은 황토로, 소량의 2 ~ 10 mm 자갈이나 강석을 함유하고 있으며, 토양의 습용중량은1.821G/CM3 이다. 천연 수분 함량은 9.18% 입니다. PH 값은 8.4 입니다. 질산염 함량은 55.3mg/kg； 입니다. 암모늄의 함량은 8.85 밀리그램/킬로그램이다. 토양 배경유 함량은 1.3 ~ 4.6 mg/kg 입니다.

실험 구역의 토양 중량 계산:120cm ×120cm ×15cm ×1.82g/cm3 =

5. 테스트 단계

실험 단계에서 적절한 기름때를 찾지 못했기 때문에 오염원을 인위적으로 첨가하는 실험 방법을 실험 연구로 선택했다. 원유 사용 방법: 현지 살구 2 우물에서 생산된 원유를 탈수한 후 800 그램을 채취해 순수 석유에테르를 500 밀리리터로 분석하여 테스트 구역에 골고루 뿌렸고, 각 테스트 구역마다 기본적으로 같은 양의 기름을 넣는다. 그러나 각 지역의 유분 함량은 반드시 같지는 않지만, 거의 비슷하며, 각 지역의 검사 데이터를 기준으로 한다.

원유의 각 실험구역의 실험토층은 고르게 살포되고, 첨가된 기름은 반복적으로 뒤집힌 후 실험층에 골고루 섞인다. 그런 다음 각 실험 구역에서 준비한 실험 첨가제 재료를 하나씩 넣는다. 1 실험 구역의 첨가물은 산산조각 난 신선한 초가지이다. 실험 구역 2 는 닭 배설물과 닭 배설물 (각각 50%) 입니다. 3 번 실험구역은 곡껍질과 곡껍질로 구성되어 있습니다. 4 번 실험구역은 밀기울입니다. 5 번 실험구역에는 원유를 첨가하는 것 외에도 균액제와 영양액도 접종했다. 6 번 실험구역은 5 번 실험구역과 마찬가지로 1 ~ 4 번과 마찬가지로 농용 플라스틱 박막으로 보온 보습 방우를 덮습니다. 통제구역에는 원유만 넣었고, 다른 것은 넣지 않았다. 빈 영역에는 재질이 없고 빈 모니터링만 있습니다. 첨가제가 실험구역에 첨가된 후, 끊임없이 시험토층을 뒤집어서 토층이 고르게 섞이게 한다.

그림 6- 10 산시 () 안세살구천 살구 2 유전 실험구역 도식

각 실험구역별로 토층 중량의 3% 를 시험하는 접종량 접종으로 배양된 균액제제를 고르게 섞는다. MgSO4 7H2O, NH4NO3, CaCl2, FeCl3, KH2PO4, K2HPO4 의 주성분인 영양액을 준비합니다. 제제의 비율은 배양기 성분의 비율에 기초한다.

위에서 준비한 실험구역에 30L 이 준비한 영양액을 넣는다. 테스트 물은 현지 얕은 지하수이고, pH 는 8.2, TDS 함량은 420.5 mg/L 입니다. 약 5L 지하수를 첨가하여 실험구역 토층 수분 함량을 20% 이상 유지한다 (수분 계산: 균액은 약 3% 로 약 12kg, 영양액 300 실험 구역을 플라스틱 박막으로 덮는 것은 보온, 보습, 비를 막기 위해서이다. 매 시간 간격으로 샘플링합니다. 샘플링 방법은 매화형으로 각 구역의 다른 지점에서 같은 깊이의 흙샘플 5 개를 채취해 완전히 혼합한 후 4 점법으로 샘플링하여 검사하는 것입니다. (데이비드 아셀, Northern Exposure (미국 TV 드라마), 계절명언) 샘플을 채취한 후 실험구역의 실험층을 갈아서 환기를 하고 산소를 늘리고 일정량의 물을 넣어 실험토양의 수분 함량이 20% 정도임을 보증한다. 대조군은 실험 구역과 같은 양의 기름을 첨가하고, 다른 것은 첨가하지 않고 자연 분해로 간주한다. 빈 영역은 모니터링 샘플로 물질을 추가하지 않습니다. 동시에, 기름, pH 값, 토양 용해성 소금, 수분 함량, NH+4, NO-3 등의 성분을 검출하는 각 구역의 샘플을 검사한다. 동시에 표면을 모니터링하고 토양의 온도를 테스트합니다. 실험 기간이 끝난 후 각 구역의 실험층 아래쪽을 계층화하여 샘플링하다.

셋째, 테스트 영역 테스트 프로세스 및 결과

(1) 1 호 실험 구역

상기 실험구역 준비에 기초하여 실험구역 실험층 토중 1.4% 의 비율에 따라 길이가 1 ~ 3 cm 인 다진 초가초를 첨가제로 섞는다. 그런 다음 실험구역 토양을 골고루 갈아서 배양기 성분의 비율에 따라 질소 인 칼슘 마그네슘 황 철 등 영양소를 조절하고 현지 지하수로 실험토층 수분 함량을 약 20% 로 조절한다. 실험 구역을 플라스틱 박막으로 덮는 것은 보온, 보습, 비를 막기 위해서이다. 매 시간 간격으로 샘플링합니다. 샘플링 방법은 해당 지역의 매화 모양의 다른 지점에서 같은 깊이 (15cm) 의 흙샘플 5 개를 취하여 완전히 혼합한 후 4 점 샘플링 테스트를 사용하는 것입니다. 테스트 결과는 표 6- 16 ~ 6- 19 와 그림 6- 1 1 에 나와 있습니다.

표 6- 16 테스트 영역 1, 비교 영역 및 빈 영역 토양 유분 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과

표 6- 17 1 지역 토양 pH, 수분 함량 (W) 및 TDS, NH+4, NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

표 6- 시험 후 1 지역 하층 토양의 유분 함량, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4 및 NO-3 함량은 깊이에 따라 변한다. 유분 함유량 TDS 함량 NH+ 함량 NO 함량 테스트 결과.

표 6- 19 2 구역 토양 유분 함유량 시간에 따른 테스트 결과

참고: 탈유율은 0 ~ 7d 의 평균 유분 함량을 초기 농도 (23 18.5mg/kg) 로 계산합니다. 셋째 날 데이터의 대표적 차이를 생략하다.

그림 6- 1 1 시험토양중유의 제거율은 시간이 지남에 따라 변한다.

1. 미생물 복원 토양에서 석유 제거율

표 6- 16 과 그림 6- 1 1 에서 볼 수 있듯이, 현장 실험을 통해 미생물 기술은 토양 석유 오염 복구에 효과적이다. 실험구역 0-7 일에 추가된 최적화 균액은 효과가 없다. 즉, 실내 최적화 균액이 밭에 응용될 때 적응기나 지연기를 거쳐 이 실험구역의 적응기간은 7 일 정도다. 그렇다면 증식기간도 대수기이다. 그림 6- 1 1 적응기간 이후 1 1 일 제거율은 40% 이상, 근무일 32 일 80.32% 에 달했다. 대조구 토양의 석유 함량은 크게 변하지 않는다 (두 개의 이상 낮은 값을 제외하고는 기본적으로 10% 이내). 이는 자연 조건 하에서 토양의 석유 분해가 느리다는 것을 보여준다. 빈 지역은 토양의 석유 함량을 반영하며 어떤 물질도 첨가하지 않았지만, 테스트 후기에는 실험 구역과 통제 구역이 빈 구역에 인접해 강우 및 인공 샘플링 활동이 해당 지역을 오염시켜 함량이 증가했기 때문일 수 있습니다.

2. 토양 pH 값, 수분 함량 (w), TDS, NH+4 및 NO-3 함량을 분석합니다.

환경의 pH 값은 미생물의 생명활동에 어느 정도 영향을 미치며 미생물 체내 세포막 전하와 효소 활성의 변화를 일으켜 미생물에 의한 영양소의 정상적인 흡수에 영향을 미칠 수 있다. PH 값 이상은 영양소의 유효성과 환경 내 유해 물질의 독성을 변화시켰다. 각 미생물의 존재는 일정한 pH 값 범위와 최적의 pH 값을 가지고 있다. 대부분의 세균의 최적 pH 는 6.5 ~ 7.5 이고 방선균의 최적 pH 는 7.5 ~ 8.0 입니다. 곰팡이는 pH 값이 3 보다 낮거나 9 보다 높고 최적 pH 값이 5 ~ 6 인 등 넓은 pH 값 범위 내에서 성장할 수 있습니다. 표 6- 17 의 pH 값 모니터링에서 알 수 있듯이, 일정량의 인산염 완충액이 첨가되었기 때문에 1 실험구역의 pH 값은 7.6-8.4 사이로 유지되는데, 대부분 8 정도이며 석유 분해균에 가장 적합한 환경은 알칼리성이다. 빈 영역과 비교 영역 pH 값은 8. 1 ~ 8.9 사이이며 실험 영역보다 약간 높습니다. 하지만 이 pH 범위 내에서는 이 실험에 큰 영향을 미치지 않습니다. 1 구역에 첨가된 인산염은 주로 미생물의 성장을 위해 영양소를 증가시키는 것이다.

물은 미생물이 석유 오염물을 분해하는 과정에서 중요한 역할 (매체와 산소원) 을 한다. 따라서 실험 구역에 미생물의 성장과 번식을 위한 충분한 수분이 있도록 수분 함량은 일반적으로 약 20% 로 유지된다. 각 샘플링 후 물의 약 4% 를 추가하십시오. 표 6- 17 의 자료에 따르면 실험층의 토양 수분 함량은 안정적으로 유지되어 실험 효과에 대한 기본적인 보증을 제공한다. 빈 지역은 자연적으로 변하는 수분 함량을 가지고 있으며, 대조구는 샘플링 후 인공 경작으로 인해 일정한 보수작용을 할 수 있다. 수분 함량은 빈 지역보다 약간 높으며 토양 석유 분해를 크게 촉진하지 않는다.

영양소는 미생물의 미생물 세포와 바이오효소의 구성 요소이다. 미생물 세포의 주요 원소는 탄소, 수소, 산소, 질소, 인 등이다. , 여기서 c 와 h 는 석유 오염 물질과 같은 유기물에서 나온다. 산소는 물, 공기 및 기타 조절 산소 공급원에서 나옵니다. 질소, 인, 미량 원소 (S, K, Ca, Mg, Fe 등) 는 영양소로 보충하고 조절해야 한다. 따라서 우리는 질소, 인, 황, 칼륨, 칼슘, 마그네슘, 철 등의 원소로 실험 구역 토양을 보충하고 조절하며, 현지 신선한 풀 (잘게 썬 것) 을 첨가제로 사용하여 다른 생물원소와 양분을 보충한다. 표 6- 17 은 수용성 소금, NH+4, NO-3 함량이 실험 과정에 따라 변하는 것을 보여 주며, 8 월 2 1 일 실험구역은 각종 영양소를 보충한다는 것을 알 수 있다. 실험이 진행됨에 따라 석유와 각종 원소가 미생물 활동에 의해 이용, 분해, 전환되면서 토양의 함량이 점차 감소하고 있다.

시험 과정이 바닥 토양에 미치는 영향

테스트 결과 (표 6- 18) 를 보면 테스트 구역 1 하층 토양의 유분 함량이 크게 증가하지 않았음을 알 수 있다. 대조와 공백에 비해 여전히 낮아져 실험층 토양의 석유가 아래로 확산되거나 분해되지 않고 질소 인 등 용해성 염류 양분 중 일부가 물과 함께 하층 토양으로 들어가는 것으로 나타났다. 이 결과는 향후 복구 작업에서 수분과 수용성 영양소의 요구 사항과 추가 방법에 특히 중요한 지침의 의의가 있다.

(ii) 두 번째 실험 구역의 시험 결과

상술한 실험 준비를 기초로 닭똥과 닭똥을 첨가제로 실험 2 실험층의 토양 무게의 4.3% 비율에 따라 골고루 섞는다. 다른 조건은 1 zone 과 동일합니다. 테스트 결과는 표 6- 19 와 그림 6- 12 에 나와 있습니다.

그림 6-12 구역 미생물 복원 토양 중유의 제거율은 시간에 따라 변한다.

1. 미생물 복원 토양에서 석유 제거율

위의 논간 실험을 통해 2 구역 실험 0 ~ 7 일 전에 추가된 최적화 균액은 1 구역과 동일합니다. 즉, 적응기간이 약 7 일 정도 필요하다는 뜻입니다. 그런 다음 증식기에 접어 들었습니다. 표 6- 19 에 따르면 실험 제 1 1 일, 즉 적응 기간 후반에 제거율이 80% 이상에 달했다. 위치가 다르기 때문에 샘플 수집으로 샘플 테스트 결과가 약간 높다. 16d 제거율은 68% 이상, 32d 는 84.3% 에 달했다.

2. 시험 토양의 pH 값, 수분 함량 (w), TDS, NH+4, NO-3 함량을 분석합니다.

일정량의 인산염 완충액을 첨가했기 때문에 실험구역의 pH 값은 7.3 ~ 8. 1 으로 유지되며, 석유 분해균에 가장 적합한 환경은 알칼리성이며 미생물의 정상적인 성장을 기본적으로 보증한다. 빈 영역과 제어 영역의 pH 값은 8. 1 ~ 8.9 사이로 실험 영역보다 높지만 이 pH 값 범위는 실험에 큰 영향을 주지 않습니다.

실험층의 토양 수분 함량은 안정적이며, 보통 20% 정도이다. 매번 샘플을 채취한 후 4% 정도의 물을 첨가하여 조절된 수분 함량이 세균의 분해를 촉진시켜 기본적으로 실험 효과를 보증한다. 빈 지역은 자연적으로 변하는 수분 함량을 가지고 있으며, 대조구는 매번 샘플링할 때마다 인위적으로 경작하기 때문에 일정한 보수작용을 할 수 있으며, 수분 함량은 빈 지역보다 약간 높다.

표 6-20 은 각 지역의 TDS, NH+4 및 NO-3 함량이 실험 과정에 따라 변하는 것을 보여 주며, 석유 및 다양한 미생물 활성 원소의 실험 과정에서의 활용, 분해 및 전환 과정을 반영한다.

표 6-20 2 구역 토양 pH, 수분 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

시험 과정이 바닥 토양에 미치는 영향

표 6-2 1 은 실험 완료 후 2 구역과 대조구역 및 공백구역 하부의 기름, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량을 보여줍니다. 실험 결과에서 볼 수 있듯이 2 구역 실험층 하층 토양의 유분 함량은 크게 증가하지 않고 대조와 공백과 유사하다. 실험층 토양의 석유가 아래로 확산되거나 분해되지 않고, pH 가치, 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량 등에서도 대조구역과 공백구역과는 달리 질소, 인 등 일부 용해성 염류 양분이 물과 함께 하층 토양으로 유입되지만 실험 결과에 영향을 미치지 않는다는 것을 보여준다.

표 6-2 1 구 하층 토양유분, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4 및 NO-3 함량이 깊이에 따라 변하는 테스트 결과

(3) 제 3 실험 구역

실험구역 배합을 기초로 65438+ 실험층 토양중량의 0.4% 비율에 따라 옥수수 50% 와 좁쌀 50% 를 첨가제로 골고루 섞는다. 다른 조건은 1 zone 과 동일합니다. 테스트 결과는 표 6-22 와 그림 6- 13 에 나와 있습니다.

표 6-22 세 번째 실험구역 토양 유분 함량이 시간에 따라 변하는 실험 결과

주: 탈유율은 0d 의 유분 함량을 초기 농도 (1886.0mg/kg) 로 계산합니다.

그림 6-13 구역 미생태 복원 토양 중유의 제거율은 시간에 따라 변한다.

1. 미생물 복원 토양에서 석유 제거율

현장 복구 실험을 통해 지질 미생물 기술이 토양 석유 오염의 현장 복구에서 효과를 인식하고 이해하다. 3 구역 초기 실험 3 일째에 첨가된 최적화 균액이 작용한다. 즉 실내최적화 제자리 토양 속 세균은 짧은 적응기간이 있고 3 구역에서는 1 ~ 2 일 후 증식기에 들어간다. 실험 3 일째 적응 기간 이후 제거율이 62% 이상에 달했지만 7 일째 데이터에 이상이 발생했다. 1 1d 제거율 76% 이상, 2 1d 제거율 80.62%, 32d 제거율 77.29%,1/ 그 결과 박테리아가 1 1 일 후 안정기에 접어들면서 토양에 대한 중유의 분해 속도가 느려지고 상대적으로 안정적이라는 사실이 드러났다.

2. 토양 pH 값, 수분 함량 (w), TDS, NH+4 및 NO-3 함량을 분석합니다.

표 6-23 구역 토양 pH, 수분 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

시험 과정이 바닥 토양에 미치는 영향

표 6-24 는 실험이 완료된 후 각 실험 구역 하부의 깊이가 다른 유분 함량, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 을 보여줍니다. 실험 결과에서 볼 수 있듯이, 실험구역 실험층 하층 토양의 유분이 약간 증가한 것을 알 수 있다. 대조와 공백에 비해 증가량이 크지 않아 실험층 토양의 석유가 부분적으로 아래로 확산되었다는 것을 알 수 있다.

표 6-24 실험 후 3 구역 및 하층 토양 유분, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량이 깊이에 따라 변하는 실험 결과.

(4) 네 번째 실험 구역

상술한 실험구역 준비에 기초하여 실험구역 토양 중량의 2.5% 비율에 따라 밀기울을 첨가제로 골고루 섞는다. 다른 조건은 1 구역과 동일하며 테스트 결과는 표 6-25 에 나와 있습니다.

1. 미생물 복원 토양에서 석유 제거율

표 6-25 와 그림 6- 14 에서 알 수 있듯이 실험 구역에 추가된 최적화 균액은 실험 초기 0 ~ 7 일 동안 작동하지 않고 적응 기간 이후 1 1 일 제거율이 70% 에 달했다. 토양의 유분이 고르지 않고 데이터의 안정성이 세균, 양분, 첨가제의 균일성에 영향을 받기 때문이다. 그러나 전반적으로 효과가 두드러져 평균 제거율이 78. 15% 에 이른다.

표 6-25 4 구역의 토양 유분 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과

참고: 탈유율은 3d 및 7d 실험구역의 평균 유분 함량을 초기 농도로 계산합니다. 0d 데이터는 동일하지 않은 샘플링으로 인해 무시될 수 있습니다.

그림 6-14 구역 미생태 복원 토양 중유의 제거율은 시간에 따라 변한다.

2. 토양 pH 값, 수분 함량 (w), TDS, NH+4 및 NO-3 함량을 분석합니다.

실험구역 pH 값은 6.6 ~ 9.0 사이로 대부분 8 이상 유지되어 pH 값이 6.6 으로 떨어지는데, 이는 첨가제를 막 첨가한 후 세균 발효 전 대량 산산으로 인한 것이다. 그런 다음 박테리아의 성장은 알칼리성을 만들어 환경을 알칼리성으로 만듭니다.

실험층의 토양 수분 함량은 기본적으로 안정적이며, 보통 20% 이상이다. 암모니아 질소도 실험에서 조절되었다 (표 6-26).

표 6-26 4 구역 토양 pH 값, 수분 함량, TDS, NH+4, NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

시험 과정이 바닥 토양에 미치는 영향

표 6-27 에서 알 수 있듯이 실험구역 실험층 하층의 석유 함량이 거의 증가하지 않고 대조와 공백구보다 약간 높다는 것은 실험층 토양의 석유가 아래로 확산되지 않았거나 분해되지 않았음을 보여준다. PH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량도 대조구역과 공백구역과는 다르다는 것을 알 수 있다. 즉 질소 인 등 용해성 염류 양분의 작은 부분이 물과 함께 하층 토양으로 들어가는 것이다.

표 6-27 실험 후 4 구역 하층 토양 유분, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4 및 NO-3 함량 테스트 결과.

(5) 다섯 번째 실험 구역

실험구역 준비에 기초하여 배양된 균액을 실험구역 5 중 실험층 중량의 3% 에 따라 실험구역에 골고루 접종한 다음 배양기 그룹 비율에 따라 질소 인 칼슘 마그네슘 황 철 등 영양액을 골고루 첨가해 현지 지하수로 실험토층 수분 함량을 20% 정도 조절한다. 일정한 간격으로 샘플링하여 테스트 결과는 표 6-28 과 그림 6- 15 에 나와 있습니다.

표 6-28 5 지역의 토양 유분 함량 시험 결과

참고: 탈유율은 실험 구역 0d 와 7d 의 평균 유량을 초기 농도로 계산합니다. 동일하지 않은 샘플링으로 인해 3d 데이터가 생략될 수 있습니다.

1. 미생물 복원 토양에서 석유 제거율

5 구역 실험 초기에 첨가된 최적화 균액은 효과가 없고 적응기간도 필요합니다. 약 7 일 정도 걸립니다. 그리고 증식기에 들어갑니다. 적응기간 이후 1 1 일, 제거율은 84.6% 이상, 실험 26 일 최대 제거율은 88.99% 에 달했지만 제거율로 볼 때 데이터가 다소 불안정했다. 64.84%-88.99 실험구역에는 첨가제와 플라스틱 박막이 첨가되지 않았지만 제거 효과는 여전히 좋다. 평균 제거율은 82.438 0% 에 달하며 관리 조치도 가능하다는 것을 보여준다.

그림 6- 15 5 구 미생물 복원 토양에서 석유의 제거율은 시간이 지남에 따라 변한다.

2. 토양 pH 값, 수분 함량 (w), TDS, NH+4 및 NO-3 함량을 분석합니다.

영역 5 의 pH 값은 7.7 에서 8.5 사이로 대부분 8 이상 유지되므로 pH 값이 7.7 로 떨어집니다. 인산염의 첨가는 단지 완충작용을 하기 위해 토양 pH 값을 중성화하는 것이기 때문이다. 그 후 세균의 성장은 염기를 생성하는데, 환경의 작용은 환경을 알칼리성 상태로 만든다. 물과 암모니아 질소의 함량이 조절되고 안정되었다 (표 6-29).

표 6-29 5 구역 토양 pH 값, 수분 함량, TDS, NH+4, NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

시험 과정이 바닥 토양에 미치는 영향

표 6-30 에서 볼 수 있듯이, 5 구역 실험층 하층 토양의 석유 함량은 증가했지만, 비교적 적고 대조와 공백보다 높아 실험층 토양의 석유가 이미 아래로 확산되었다는 것을 알 수 있다. PH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량도 대조군 및 공백과는 달리 질소, 인 등 용해성 염류 양분 중 작은 부분도 물을 따라 하층 토양으로 들어가는 것을 알 수 있다. 전체 실험 과정에서 플라스틱 박막을 덮지 않았기 때문에 중간 몇 차례 강수 오염물과 양분이 아래로 이동했기 때문이다.

㈥ 여섯 번째 실험 필드 테스트 결과

실험구역 준비에 기초하여 배양된 균액을 실험구역 6 중 실험층 토양 무게의 3% 에 따라 실험구역 6 에 골고루 접종한 다음 양성기 그룹 비율에 따라 질소 인 칼슘 마그네슘 황 철 등 영양액을 골고루 첨가해 현지 지하수로 실험토층 수분 함량을 20% 정도 조절한다. 플라스틱 박막으로 실험 구역을 덮고 보온, 보습, 비를 막고 일정한 시간마다 샘플을 채취한다. 샘플 테스트 결과는 표 6-3 1 과 그림 6- 16 에 나와 있습니다.

표 6-30 실험 후 5 구역 하층 토양 유분, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량 테스트 결과.

1. 미생물 복원 토양에서 석유 제거율

6 구역의 적응기간도 7 일가량, 실험 초기 0 ~ 7 일 동안 첨가된 최적화균액이 작용하지 않았다. 그런 다음 증식기에 들어갑니다. 적응 기간 이후 5 일째인 1 1 일, 제거율은 90% 이상, 32 일째에는 8 1.88%, 평균 제거율은 87.2/입니다.

표 6-3 1 6 지역의 토양 유분 함량은 시간이 지남에 따라 시험 결과를 변화시킨다.

참고: 탈유율은 실험 구역 0d 와 7d 의 평균 유량을 초기 농도로 계산합니다. 동일하지 않은 샘플링으로 인해 3d 데이터가 생략될 수 있습니다.

그림 6-16 구역 미생태 복원 토양중유의 제거율은 시간이 지남에 따라 변한다.

2. 토양 pH 값, 수분 함량 (w), TDS, NH+4 및 NO-3 함량을 분석합니다.

표 6-32 의 pH 값 모니터링에서 볼 수 있듯이, 6 구역 pH 값은 7.6-8.4 사이에 남아 있으며, 대부분 8 이상, 이로 인해 pH 값이 7.6 으로 떨어지는데, 이는 인산염이 첨가된 후 완충작용으로 인해 토양 pH 값이 중성화되는 것을 알 수 있다. 그 후 세균의 성장은 염기를 생성하는데, 환경의 작용은 환경을 알칼리성 상태로 만든다.

표 6-32 6 구역 토양 pH 값, 수분 함량, TDS, NH+4, NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

시험 과정이 바닥 토양에 미치는 영향

실험 결과 (표 6-33) 에서 볼 수 있듯이, 6 구역 실험층 하층 토양의 기름 함량은 증가했지만, 5 구역보다 적다. 실험구역은 플라스틱 박막을 덮고 강수의 영향을 줄이며 첨가제가 없는 것도 원인 중 하나다. 대조와 공백에 비해 비교적 높다는 것은 실험층 토양의 석유가 어느 정도 하향 확산되었다는 것을 보여준다.

표 6-33 깊이 테스트 후 6 구역 하층 토양 유분, pH 값, 수분 함량 (W), TDS, NH+4 및 NO-3 함량 테스트 결과.

(7) 비교 영역 및 빈 영역 테스트 결과.

실험 구역의 배합을 기초로, 대조 구역에는 원유만 첨가하고, 다른 실험 재료는 추가하지 않고, 여러 번 갈아서 고르게 섞는다. 빈 영역은 다른 테스트 재질을 추가하지 않으며 뒤집히지 않습니다. 동시에, 두 영역과 다른 실험 영역은 일정한 간격으로 샘플링되며, 샘플링 방법은 실험 영역과 동일합니다. 즉, 매화 모양의 다른 지점에서 동일한 깊이 (15cm) 의 흙샘플 5 개를 취하여 완전히 혼합한 후 4 점 방법으로 실험을 샘플링합니다. 검출된 성분은 석유 함량, pH 값, 수분 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량 등이다. 실험 기간이 끝난 후 각 구역의 실험층 아래쪽을 계층화하여 샘플링하다. 샘플링 결과는 표 6-34 ~ 6-36 에 나와 있습니다.

표 6-34 통제구역 토양 유분 검사 결과, 시간 단위: mg kg- 1

표 6-35 비교 영역과 빈 영역 토양 pH, 수분 (W), TDS, NH+4 및 NO-3 함량이 시간에 따라 변하는 테스트 결과.

표 6-36 실험 후 대조와 공백구 하층 토양의 유분 함량, pH 값, 함량 (W), TDS, NH+4, NO-3 함량이 깊이에 따라 변하는 실험 결과.

현장 현장 테스트를 통해 두 가지 이상 낮은 값 (기본적으로 10% 정도, 최대 13.3%) 을 제외하고 대조구 토양의 유분 함량은 테스트 기간 동안 크게 변하지 않았다. 자연 조건 하에서 토양에서 석유의 분해가 단시간에 느리다는 것을 설명한다. 16d 와 2 1d 의 테스트 데이터는 토양의 함량이 고르지 않아 발생하는 것일 수 있으며, 토양 물질 구성의 불균형성과 복잡성을 반영한다. 빈 지역은 토양의 석유 함량을 반영하며 어떤 물질도 첨가하지 않았지만, 실험 후기에는 실험 구역과 통제 구역이 빈 구역에 인접해 있어 강우와 인공 샘플링으로 오염되어 함량이 증가했다. 다른 조의 변화는 기본적으로 자연 조건 하에서 강수량의 변화에 따라 변한다.

넷. 실험 토론 및 결론

1. 토양 중 석유 제거율

표 6-37 에서 알 수 있듯이, 실험 초기에 대부분의 실험지역에 첨가된 최적화 균액은 효과가 없습니다. 즉, 실내 최적화 균액이 밭에 적용될 때 세균의 적응기나 지연기가 필요하며, 이번 실험의 대부분 실험구역의 적응기간은 기본적으로 7 일 정도입니다. 그렇다면 증식기간도 대수기이다. 표 6-37 에 따르면 실험 1 1 일 이후 적응기간 이후 제거율이 40% 를 넘었다. 단지 3 구역의 실험만 약간 다르다. 이 지역의 세균의 적응기간은 비교적 짧아 3 ~ 4 일이다. 전체 실험 과정과 실험 결과를 보면 실험 효과가 현저하지만 샘플 위치와 토양의 불균일성으로 인해 일부 데이터가 낮거나 높다. 그러나 16d 로 실험할 때 제거율이 68% 이상에 달했다. 물론 테스트 조건이 다르기 때문에 각 테스트 영역의 결과도 다릅니다. 전반적으로 각 실험 구역의 최대 제거율은 모두 80% 이상이다. 대조구 토양의 석유 함량은 크게 변하지 않는다. 두 가지 이상 낮은 값을 제외하고는 기본적으로 10% 정도이며, 자연 조건 하에서 토양의 석유가 단기간에 느리게 분해되는 것을 보여준다. 16 및 2 1d 의 테스트 데이터는 토양의 함량이 고르지 않다는 것을 나타낼 수 있으며, 이는 토양 물질 구성의 이질성과 복잡성을 반영한다. 빈 지역은 토양의 석유 함량을 반영하며 어떤 물질도 첨가하지 않았지만, 실험 후기에는 실험 구역과 통제 구역이 빈 구역에 인접해 있어 강우와 인공 샘플링으로 오염되어 함량이 증가했다.

표 6-37 살구자천 유전 살구 2 채유정장 현장 미생태 복원 토양 중유의 시간 경과에 따른 분해율:%

2. 미생물 복원 기술의 통제 요인

미생물 복구 기술은 현장 미생물 균군을 최대한 활용하고, 물리 화학적 방법과 지질 환경을 결합하여 미시적 효과로 거시적 환경을 변화시키는 현장 복구 기술이다. (윌리엄 셰익스피어, 미생물, 미생물, 미생물, 미생물, 미생물, 미생물, 미생물, 미생물) 이 기술의 응용의 관건은 미생물과 지질 환경의 결합, 상호 의존성, 상호 작용, 규제이다. 조절인자에는 주로 온도, 물, 산소, 영양원소, 지질환경 개선이 포함되며, 원소 전환 촉진, 유독유해 물질 분해, 제자리 통제 복구 환경오염을 촉진하는 데 쓰인다.

(1) 토양 온도 조절

온도는 미생물의 성장과 생존에 영향을 미치는 중요한 요소 중 하나이며, 미생물의 활동 강도와 생화학 기능은 모두 이와 관련이 있다. 실험구역에 최적화된 미생물균군은 대부분 온기미생물 (13 ~ 45 C) 으로 최적 성장온도는 25 ~ 38 C 이다. 실험 단계 표면의 최고 및 최저 온도를 모니터링함으로써 빈 영역이 표면의 자연 최고 및 최저 온도임을 나타냅니다. 8 월 하순부터 9 월 상순까지 이 지역의 지표 최고 기온은 대부분 25 C 이상이지만 최저 기온은 20 C 미만이며 낮과 밤의 온도차가 크다. 온도를 조절하는 방법은 테스트 효과의 관건이다. 따라서 우리는 실험 구역에서 농용 플라스틱 박막을 사용하여 보온을 하였으며, 9 월에 기온이 현저히 떨어지자 저녁에 다시 초렴으로 덮었습니다. (데이비드 아셀, Northern Exposure (미국 TV 드라마), 계절명언) 예방 치료 효과로 볼 때 실험구역의 토양 온도는 15cm 에서 크게 높아져 빈 지역보다 5 ~ 8 C 이상 높아졌으며, 특히 9 월 상순 이전에 더욱 그러하다. 그러나 온도가 낮아짐에 따라 토양 중유의 제거율도 감소하고 있다. 이번 실험과 온도 모니터링을 통해 이 지역에서 미생태 복구 기술을 실시하는 최적의 온도 기간은 매년 6 월 하순부터 9 월 상순까지라는 결론을 내릴 수 있다. 조절함으로써 토양 온도를 25 C 이상으로 유지함으로써 미생물과 세균의 활력과 번식력을 보장한다.

(2) 토양 중 산소 조절

산소의 공급은 미생물 세균이 유기물을 분해하는 과정에서 중요한 조절 요소 중 하나가 되었다. 이 실험은 네 가지 방면에서 토양산소 공급을 조절한다. 먼저, 시험토층을 충분히 갈고, 매번 샘플을 채취한 후 갈아서 대기와 충분히 섞이게 한다. 둘째, 시험토에 일정한 수분 함량이 있는지 확인하고, 수분 함량을 20% 정도 유지하고, 물에서 공급되는 산소를 얻는 것이다. 또한 일부 실험 구역에서는 신선한 풀, 닭 배설물, 곡식 껍질, 밀기울 등과 같은 첨가제를 사용한다. 이 첨가제는 값싸고 쉽게 얻을 수 있을 뿐만 아니라 토양에 양분을 보충하고 실험층 토양을 개량하며 팽창성과 통기성을 증가시켜 공기 중의 산소가 쉽게 들어갈 수 있게 한다. K2HPO4, KH2PO4, MgSO4 7H2O, NH4NO3, NO-3 등과 같은 산소 영양분을 첨가하면 질소, 인, 마그네슘이 증가할 뿐만 아니라 산소의 원천 중 하나이다. 위의 통제 조치는 미생물이 토양의 중유류를 분해하는 데 충분한 산소원을 제공하여 미생물 세균이 토양의 중유류를 분해하는 데 필요한 산소를 보장한다.

현장 현장 수리 시험 결론

전체 실험 과정과 방법에서 다음과 같은 주요 결론을 도출할 수 있다.

1) 북살구천 황토구 석유 채굴 석유 오염 토양 현장 미생태 복구 방법에 대한 실험 연구를 통해 현장 미생물균군을 최적화해 물리화학방법 미생태기술을 결합해 실험구역 토양온도, 수분, 산소, 영양원소, 지질환경인자를 조절하여 토양중유의 분해복구 실험을 실시한다. 실험 결과 토양의 평균 유분이 2000mg/kg 를 넘는 것으로 나타났다. 1 1 ~ 32d 의 현장 미생물 복구 기술을 통해 토양 중유류 함량 제거율이 40 ~ 80% 이상에 이를 수 있으며, 지질미생태복구 기술이 살구천 황토지역 토양석유오염 복구의 유효성, 과학성, 생태성을 검증해 보급 응용을 탐구했다.

2) 이 지역에서 미생태 복원 기술을 적용하는 최적의 온도 계절은 매년 6 월 하순부터 9 월 상순까지 조절함으로써 토양 온도를 25 C 이상으로 유지하여 미생물 세균 활력과 번식력의 온도 수요를 보장해야 한다고 밝혔다.

3) 본 실험에서 영양소에 대한 조절과 토양 환경 개선이 적정하다는 것을 검증했다. 방법이 가능하다.

실험 과정은 현장 현장 토양 석유 오염 복구 실험에서 현장 미생물 복구 기술의 효율성과 타당성을 검증했으며, 처리 방법이 간단하고, 비용이 저렴하며, 복구 효과가 좋고, 환경 영향이 적고, 2 차 오염이 없고, 현장 처리가 가능하다는 장점이 있다. 실험적인 연구이지만 대규모 현장 복구에는 보완이 필요하지만 끊임없는 노력을 통해 이뤄질 수 있다. 토양, 폭기대, 지하수의 석유 오염을 효과적으로 복구할 수 있을 뿐만 아니라, 토양 비옥도를 높이고, 토양 환경을 개선하고, 부정적인 영향을 미치지 않습니다. 오염된 토양의 복구와 작물 증산에 중요한 의의가 있으며, 토양의 대면적 석유 오염을 근본적으로 복구하고 통제하는 효과적인 방법 중 하나이며, 어느 정도 보급 응용 작용을 가지고 있다.